Frag de coral: como fragmentar e cuidar do frag

Dá para fragmentar coral em casa?

Dá. Fragmentar (ou «fragar», como se diz no hobby) é cortar um pedaço de uma colônia saudável e fixar esse pedaço num suporte para ele crescer como coral novo. É assim que os frags de loja são produzidos, e é a mesma técnica que os projetos de restauração de recife usam no mar. Um estudo com o coral-chifre-de-veado do Caribe (Acropora cervicornis), de Lirman e colegas na revista Coral Reefs (2010), mostrou que tirar as pontas dos ramos não causou mais morte na colônia doadora além do pedaço retirado.

Três perguntas decidem se o corte dá certo: o coral está bem para ser cortado, você vai cortar do jeito que aquele grupo aceita, e o frag terá água estável nas semanas seguintes. Antes delas vem a segurança, que neste assunto tem um nome: palitoxina.

Segurança: o risco real da palitoxina

Zoantídeos — os zoanthus e as palythoas, os «botões» coloniais do marinho — podem conter palitoxina. Deeds e colegas (PLOS ONE, 2011) a descrevem como uma das toxinas mais letais já descobertas. Eles compraram zoantídeos em lojas de aquário da região de Washington, D.C., nos EUA, e acharam quatro exemplares altamente tóxicos, todos da mesma espécie aparente. A olho, ninguém sabe se a colônia da sua rocha é das tóxicas (conclusão nossa: os autores precisaram de análise química e genética para saber). Trate todo zoantídeo como se fosse.

Como os acidentes acontecem. O CDC, o órgão de saúde pública dos EUA, investigou casos no Alasca entre 2012 e 2014: pelo menos dez pessoas tiveram sinais compatíveis com a palitoxina depois de manusear zoantídeos ou de estar perto de quem manuseava. Um deles cortou pólipos da rocha sob água quente, na garagem; a esposa e o cachorro, que só passaram por ali, também foram afetados. Os sintomas começaram com gosto amargo e metálico na boca em até 2 horas, seguidos de tosse, dor nas articulações, febre e sensação de frio. O CDC recomenda cautela com qualquer atividade que possa produzir aerossol, como esfregar a rocha ou usar água quente para remover zoantídeos.

A revisão de Pelin e colegas (Marine Drugs, 2016) reúne os casos de aquário publicados: exposição por inalação, pela pele e pelos olhos, quase sempre ao despejar água fervente ou escovar rochas com esses animais. A mesma revisão não registra nenhuma morte por exposição em aquário, mas há casos graves: no Alasca, o casal da garagem passou dias na UTI e ele ainda tinha efeitos nos pulmões dois anos depois (CDC). Os casos nos olhos são os que mais pesam: viram inflamação da córnea e, nos graves, cirurgia. Numa série de casos de córnea publicada em 2017 (Farooq e colegas, sete pacientes, dez olhos), quatro olhos precisaram de transplante de córnea; os autores, no texto comentado pela Academia Americana de Oftalmologia, recomendam que o aquarista use óculos de proteção e luvas.

Para os outros corais, a luva e os óculos continuam valendo (conselho nosso): alguns ferroam, o muco de vários irrita a pele e o pó do esqueleto cortado com serra não deve ir para o olho. E a cola instantânea gruda a pele em segundos.

O que você precisa

• Luva e óculos de proteção. Antes de tudo.
• Ferramenta de corte. Para coral duro de ramo fino, alicate de corte (o «alicate de osso», bone cutter) resolve. Para placa grossa ou esqueleto maciço, serra (conselho nosso, pela prática do hobby). Os estudos de restauração usam serra de fita diamantada resfriada com água do mar (Page e colegas, 2018; Oren e colegas, 2026). Para coral mole, lâmina ou bisturi limpo (conselho nosso).
• Suporte. Plug de cerâmica, disco ou pedrinha de rocha.
• Cola. Cianoacrilato em gel e, para peça maior, epóxi de uso subaquático (veja abaixo).
• Um recipiente com água do próprio aquário, para o coral esperar fora do aquário o menor tempo possível, e papel toalha para secar o ponto da cola (conselho nosso).

Que cola usar?

A resposta curta: cianoacrilato em gel (a «cola instantânea» em gel) para frag pequeno, e epóxi de uso subaquático (a massa de duas partes que cura molhada) para peça grande ou pesada (a divisão por tamanho é conselho nosso). As duas colas aparecem nos estudos: Page e colegas (Ecological Engineering, 2018) fixaram os microfragmentos com cianoacrilato em gel e usaram epóxi subaquático nos dois tamanhos de fragmento; Oren e colegas (Scientific Reports, 2026) colaram os microfragmentos em placas de cerâmica com cianoacrilato em gel.

O gel, e não o líquido, porque não escorre e pega com o coral molhado (conselho nosso, pela prática do hobby). Como usar (conselho nosso): seque a base do frag e o plug com papel, ponha uma gota de gel no plug, encoste o frag sem passar cola no tecido vivo e segure alguns segundos. Uma dica comum é encostar uma pitada de epóxi no gel: a peça firma mais depressa. Coral mole não aceita cola bem — couro e cogumelo se prendem por outros meios (próxima seção; conselho nosso).

Como cortar cada tipo de coral

O ponto de corte muda com o grupo. A tabela resume o que os guias de cada coral do site dizem, com duas exceções: a linha do SPS ramificado é conselho nosso, e a do zoanthus segue o NCCEH (não quebrar rocha com zoantídeo).

Tamanho do pedaço: os estudos de Lirman e de Page indicam que pedaço pequeno funciona, com uma condição. Lirman e colegas cortaram pontas de 2,5 a 3,5 cm de acropora: as pontas pequenas tiveram mortalidade inicial no manuseio e no transporte, e as que sobreviveram cresceram bem. Page e colegas compararam, no mar da Flórida, microfragmentos de cerca de 1 cm² de dois corais maciços de crescimento lento com fragmentos de 16 a 64 cm²: no ponto perto da costa, excluídas as parcelas com mais de 40% de predação, os conjuntos de microfragmentos de Orbicella faveolata produziram 10 vezes mais tecido que os fragmentos grandes, num acompanhamento de 31 meses. Com todas as parcelas, sobrevivência e crescimento não diferiram entre os dois tamanhos. Isso é resultado de campo, com corais do Caribe; no aquário, a leitura que fazemos é só esta: pedaço pequeno não é pedaço condenado, mas é o que mais sofre com manuseio ruim (conclusão nossa).

Passo a passo

1. Escolha um coral que está bem. Pólipos abertos, cor normal e nenhum sinal de praga há semanas. Oren e colegas deixaram as colônias sete dias se recuperando da coleta antes de cortar. Coral recém-chegado, fechado ou perdendo cor não se corta (conselho nosso, o mesmo do guia da tocha); antes, veja o guia do coral fechado ou perdendo cor.
2. Teste a água antes. Alcalinidade, cálcio, magnésio, salinidade e temperatura dentro da faixa da casa (guia da tríade do reef; conselho nosso). Frag novo num aquário instável é o caminho mais curto para perder o pedaço e a mãe (conclusão nossa).
3. Prepare tudo antes de tirar o coral. Luva, óculos, plugs, cola, recipiente com água do aquário.
4. Corte rápido. Fora d'água pelo menor tempo possível; zoantídeo, sempre submerso. Corte limpo, de uma vez, sem esmagar o tecido (conselho nosso).
5. Cole. Seque a base e o plug, gota de gel, encoste e segure. Cola fora do tecido vivo.
6. Devolva os dois ao aquário. A colônia-mãe volta ao lugar dela; o frag vai para um ponto de luz mais baixa e fluxo moderado (conselho nosso; os guias de cada coral dão a faixa).

Como cuidar do frag nas primeiras semanas

As primeiras semanas são o período de risco. No estudo de Lirman, os ramos da colônia doadora cresceram menos logo depois do corte e só passaram a crescer mais rápido que os ramos intactos depois de uma recuperação de cerca de 3 a 6 semanas. Somando o crescimento das pontas cortadas e o rebrote dos ramos doadores, o coral novo produzido foi 1,4 a 1,8 vez o crescimento das colônias não cortadas. Ou seja, o corte bem feito não só não mata a mãe como multiplica o coral — desde que ela tenha tempo para se recuperar (conclusão nossa).

• Luz. Comece abaixo do ponto onde a mãe estava e suba aos poucos. O frag está curando o corte e não precisa do choque de luz (conselho nosso; a rampa e o PAR de cada grupo estão no guia de iluminação de corais).
• Fluxo. Moderado e indireto: tira o muco e o detrito da ferida sem arrancar o frag do plug (conselho nosso). A faixa por tipo de coral está na calculadora de fluxo do reef.
• Vizinhos. Longe de coral agressivo e de peixe ou caranguejo que belisca (conselho nosso).
• Água estável. Não mude dosagem, luz e bomba na mesma semana (conselho nosso).
• Comida. Alimentar o coral é opcional, com as regras do guia de alimentação de corais.
• O que observar. Sinal bom: pólipos abertos nos dias seguintes e, depois, tecido avançando sobre a cola e o plug. Sinal ruim: tecido descolando a partir do corte, mancha branca crescendo ou alga cobrindo a ferida (conclusão nossa). Coral que piora depois de cortado pede o diagnóstico em ordem do guia do coral fechado.

Nem todo coral responde igual. No estudo de Oren e colegas, com microfragmentos de cerca de 1 cm² colados em cerâmica, a sobrevivência depois de 204 dias foi de 97,5% na Stylophora pistillata e 97,4% na Galaxea fascicularis, mas de 85,8% na Cyphastrea microphthalma e só 32,4% na Pocillopora favosa. Com a mesma técnica, a espécie mudou o resultado (conclusão nossa).

Frag que vai para outro aquário

Frag que você dá ou troca leva junto o que estiver na base: ovo de planária, de nudibrânquio, aiptasia pequena. Quem recebe deve tratá-lo como coral novo de loja: inspeção com lupa, dip e troca do plug, como manda o guia de aclimatação e dip de coral novo; as pragas e como reconhecê-las estão no guia de pragas de coral. E quem dá avisa: zoantídeo vai com o aviso da palitoxina (conselho nosso).

Erros comuns

A lista é leitura nossa; a fonte vai indicada onde há.

• Fragar zoanthus sem luva e sem óculos, ou fora d'água espirrando. É o acidente que os relatos médicos descrevem.
• Ferver ou escaldar rocha com zoantídeo para «limpar». É o caso clássico de intoxicação por inalação (CDC; Deeds e colegas).
• Cortar coral estressado ou recém-chegado. A chance é perder as duas partes.
• Cola no tecido vivo. A cola vai no esqueleto e no plug.
• Frag direto no ponto mais forte de luz. A ferida e a luz nova somam estresse.
• Mudar tudo depois do corte. Uma coisa de cada vez.

Perguntas frequentes

De onde vêm os números

Esta página afirma números sobre casos de intoxicação, tamanho de fragmento, recuperação e sobrevivência; cada um tem a sua fonte. O que está marcado como «conclusão nossa» ou «conselho nosso» é nosso, não das fontes. A tabela de corte resume os guias de cada coral do site, com as exceções ditas acima dela.

• Hamade e colegas — Suspected Palytoxin Inhalation Exposures Associated with Zoanthid Corals in Aquarium Shops and Homes — Alaska, 2012–2014 (CDC, MMWR, 2015) — relatório do órgão de saúde pública dos EUA. Sustenta as pelo menos dez pessoas afetadas, o corte de pólipos sob água quente na garagem, o gosto amargo e metálico em até 2 horas e os sintomas seguintes, a internação em UTI e os efeitos nos pulmões dois anos depois, e a cautela com esfregar ou usar água quente.
• Deeds e colegas — Palytoxin Found in Palythoa sp. Zoanthids (Anthozoa, Hexacorallia) Sold in the Home Aquarium Trade (PLOS ONE, 2011) — artigo revisado por pares. Sustenta a palitoxina como uma das toxinas mais letais conhecidas, os quatro exemplares altamente tóxicos comprados em loja, e o caso de reação respiratória ao ferver.
• Pelin e colegas — Palytoxin-Containing Aquarium Soft Corals as an Emerging Sanitary Problem (Marine Drugs, 2016) — revisão revisada por pares. Sustenta as vias de exposição (inalação, pele, olhos), os casos ao despejar água fervente ou escovar rochas, o tratamento dos casos nos olhos e a ausência de morte registrada por exposição em aquário.
• NCCEH — Palytoxin: A potent but poorly understood marine toxin found on aquarium coral (2019) — centro de colaboração em saúde ambiental do governo do Canadá. Sustenta luvas, máscara P100, macacão e óculos, o local ventilado, não quebrar, escovar nem esfregar coral com zoantídeo nem expô-lo a vapor ou água quente, e o atendimento médico imediato.
• American Academy of Ophthalmology, EyeNet — Corneal Toxicity After Exposure to Aquarium Coral Palytoxin — academia médica de oftalmologia dos EUA, comentando Farooq e colegas (American Journal of Ophthalmology, 2017). Sustenta a série de sete pacientes (dez olhos), os quatro olhos com transplante de córnea e a recomendação dos autores de óculos de proteção e luvas.
• Lirman e colegas — Propagation of the threatened staghorn coral Acropora cervicornis: methods to minimize the impacts of fragment collection and maximize production (Coral Reefs, 2010) — artigo revisado por pares. Sustenta a colônia doadora sem morte além do pedaço retirado, as pontas de 2,5 a 3,5 cm, a recuperação de cerca de 3 a 6 semanas, a perda inicial no manuseio e o coral novo 1,4 a 1,8 vez maior que nas colônias intactas.
• Page, Muller e Vaughan — Microfragmenting for the successful restoration of slow growing massive corals (Ecological Engineering, 2018) — artigo revisado por pares. Sustenta os microfragmentos de cerca de 1 cm² contra os de 16 a 64 cm², a serra resfriada com água do mar, o cianoacrilato em gel e o epóxi subaquático, e as 10 vezes mais tecido em 31 meses, no ponto perto da costa e excluídas as parcelas com mais de 40% de predação.
• Oren e colegas — Micro-fragmentation of four coral species towards the assembly of modular 3D structures for restoration (Scientific Reports, 2026) — artigo revisado por pares. Sustenta os sete dias de recuperação antes do corte, os microfragmentos de cerca de 1 cm² cortados com serra diamantada e colados com cianoacrilato em gel, e a sobrevivência em 204 dias por espécie.

O que não tem fonte, e fica dito. Não achamos fonte de primeira linha sobre quanto tempo um frag leva para «pegar» no plug dentro de um aquário doméstico, nem sobre a melhor luz e o melhor fluxo para o frag recém-cortado: o que a página diz sobre isso é conselho nosso. Os estudos de fragmentação são de restauração de recife, no mar ou em tanque de pesquisa; levá-los para o aquário é leitura nossa.