Primeiro: o coral branco ainda não morreu
Coral que fecha os pólipos, empalidece ou para de crescer está dando um aviso, e a causa a procurar está fora dele: luz, água, comida, um bicho ou a correnteza. A NOAA, a agência oceânica dos EUA, explica o que é o branqueamento: quando o coral sofre com mudança de temperatura, luz ou nutrientes, ele expulsa as algas simbiontes (as zooxantelas, que vivem no tecido dele e o alimentam) e fica branco. E a NOAA diz com todas as letras: coral branqueado não está morto. Sem as algas, ele perde a principal fonte de comida e fica mais sujeito a doença. A NOAA também avisa que o coral branqueado está sob mais estresse e pode morrer; quando o branqueamento não é severo, ele pode se recuperar. Por isso vale achar a causa logo — sem mudar dez coisas ao mesmo tempo (conselho nosso).
A ordem abaixo é nossa: vai do que mais costuma mudar sem o aquarista perceber ao que exige mais observação. Faça um passo de cada vez e anote o que encontrar.
Passo 1: o que mudou nas últimas semanas?
Comece pela pergunta mais barata. Anote tudo o que mudou de duas a quatro semanas para cá: luminária nova, LED trocado, programação mexida, coral mudado de lugar, peixe ou invertebrado novo, sal de outra marca, bomba nova, dosagem começada ou parada, refil de mídia trocado. Um coral que estava bem e piorou de repente aponta para um evento, não para uma doença lenta (conclusão nossa).
- Luz nova ou mais forte. A NOAA registra que, com a água quente, a radiação solar alta contribui para o branqueamento dos corais de água rasa. No aquário, o caso típico é a luminária nova ligada já forte: o coral clareia de cima para baixo, no lado virado para a luz (conclusão nossa, pela mesma física). A correção é baixar a intensidade e subir em rampa, ao longo de semanas — a rampa, o PAR (a luz útil que chega ao coral) de cada grupo e o fotoperíodo estão no guia de iluminação de corais.
- Coral recém-chegado. Ele veio de uma luz que você não conhece. Coral novo entra na sombra ou na base e sobe aos poucos (guia de aclimatação e dip de coral novo).
- Coral mudado de lugar. Subir um coral na rocha é aumentar a luz que ele recebe sem mexer na luminária (conclusão nossa).
Passo 2: temperatura, salinidade e alcalinidade
Se nada mudou, teste a água. Três parâmetros entram aqui, nesta ordem, porque são os que mexem mais rápido com o coral (a ordem é nossa).
Temperatura. A NOAA cita o aquecimento da água como a principal causa de branqueamento nos recifes. O programa Coral Reef Watch, da NOAA, considera que o coral entra em estresse térmico quando a água passa 1 °C acima da média do mês mais quente do lugar, e mede o calor acumulado nas últimas 12 semanas em «graus-semana»: com 4 °C-semanas, espera-se branqueamento no recife todo, principalmente nas espécies mais sensíveis; com 8 °C-semanas ou mais, branqueamento com morte dos corais sensíveis ao calor. Atenção: esses números são de recife no oceano, medidos contra a média de cada lugar; não existem para aquário, que não tem «mês mais quente», e não servem como limite para o seu termômetro. O que se pode levar para o aquário é a lógica (conclusão nossa): o estrago vem de calor acima do normal mantido por semanas, e se acumula — na conta da NOAA, 1 °C acima por quatro semanas já soma 4 °C-semanas. Para o aquário de recife, o químico Randy Holmes-Farley recomenda 24,4 a 27,8 °C (76 a 82 °F, a faixa da tabela do artigo dele; no texto, ele aceita até 83 °F, 28,3 °C). Confira o termômetro contra outro: aquecedor travado ligado é causa comum de calor que ninguém vê (conclusão nossa). Para o verão, o guia de resfriamento do aquário marinho.
Salinidade. Holmes-Farley recomenda 35 ppt (partes por mil), que corresponde a densidade de 1,0264, e escreve que há pouca evidência real de que outro valor seja melhor para o recife. A salinidade sobe quando a água evapora e ninguém repõe, e cai quando a reposição automática dispara (guia de salinidade e reposição automática). Refratômetro descalibrado engana; calibre-o com solução de referência antes de concluir algo (conselho nosso). Para corrigir sem tranco, use a calculadora de correção de salinidade.
Alcalinidade. Holmes-Farley recomenda 7 a 11 dKH e lembra que o coral usa a alcalinidade, com o cálcio, para montar o esqueleto. Duas coisas olham para o coral fechado: a alcalinidade baixa demais, que tende a frear o crescimento, e a alcalinidade que oscila, subindo e caindo entre um teste e outro (conclusão nossa). Ele não fixa um número de oscilação aceitável no artigo de parâmetros; o que a casa recomenda é escolher um valor dentro da faixa e mantê-lo estável (posição nossa, a mesma do guia da tríade do reef). Teste no mesmo horário, por alguns dias seguidos, para ver se o número anda. Magnésio baixo é causa escondida de alcalinidade instável (está na tríade).
Passo 3: nutriente zerado ou alto
Com temperatura, salinidade e alcalinidade no lugar, olhe o nitrato e o fosfato. Aqui o problema pode estar nos dois extremos.
Zerado. Holmes-Farley recomenda hoje 5 a 50 ppm de nitrato e 0,06 a 0,3 ppm de fosfato, e escreve que é possível baixar o fosfato demais, o que pode deixar os corais pálidos e favorecer dinoflagelados (microalgas que viram praga no reef). Aquário muito limpo, com skimmer forte, mídia removedora de fosfato e pouca comida, pode chegar a esse ponto — e o teste comum lê «zero» (conclusão nossa). Coral pálido com nutriente no chão pede subir a alimentação ou reduzir a remoção, devagar (guia de nitrato e fosfato no reef).
Desequilibrado. Um estudo publicado na Nature Climate Change (Wiedenmann e colegas, Universidade de Southampton, 2013) mostrou que nitrogênio alto com fosfato limitado deixa o coral mais sujeito ao branqueamento por temperatura e por luz: o excesso de nitrogênio leva as algas simbiontes à falta de fosfato. A lição para o aquário (conclusão nossa): nitrato alto com fosfato zerado não é «água limpa», é água fora de proporção — e piora o efeito de calor ou luz forte.
Alto. Nutriente muito acima da faixa também cobra: alimenta alga que disputa espaço com o coral (conclusão nossa). Corrija devagar, com os métodos e os limites que estão no guia de nitrato e fosfato.
Passo 4: praga no coral
Parâmetros certos e um coral que piora sozinho, enquanto os vizinhos estão bem, apontam para um bicho no próprio coral (conclusão nossa). Olhe de perto, com lupa e lanterna, inclusive na base e no plug:
- Acropora clareando em manchas, com marcas de mordida: planária de acropora (AEFW).
- Acropora de pele lisa com pólipos fechados e pontinhos amarelos: red bugs, copépodes parasitas.
- Montipora com uma linha branca avançando sobre o tecido: nudibrânquio de montipora.
- Anêmona pequena, marrom-clara ou verde, perto da base: aiptasia ou majano, que queimam o coral vizinho (guia de aiptasia e majano).
Como reconhecer cada praga, o dip e o ciclo de tratamento estão no guia de pragas de coral. Um teste rápido de lá: um jato de seringa sobre a colônia faz a planária adulta se soltar e aparecer na correnteza.
Passo 5: peixe ou invertebrado que belisca
Coral que abre de noite e fecha de dia, ou que aparece com pólipos arrancados, pode estar sendo beliscado (conclusão nossa). Os suspeitos estão nas fichas do site, na nota sobre recife de cada espécie. Exemplos: o anjo-lemonpeel come pólipos de vários corais; o blênio-lawnmower, quando falta alga para raspar, passa a beliscar pólipos; o caranguejo-esmeralda, sem alga, parte para os pólipos. Os peixes-anjo são o grupo que mais aparece com essa nota nas fichas (contagem nossa, em 03/10).
Observe o aquário alguns minutos depois de a luz acender e, à noite, com uma lanterna fraca: caranguejo e muitos caronas saem no escuro (conselho nosso). E lembre do coral vizinho: alguns corais estendem tentáculos varredores, filamentos que queimam quem está ao alcance (o guia de nano reef explica).
Passo 6: fluxo de água
A correnteza leva comida e oxigênio até o coral e tira dele o que ele solta. Depois do branqueamento de 1998 nas ilhas Ryukyu, no Japão, onde corais da mesma espécie morreram num lugar e sobreviveram em outro a poucos quilômetros, Nakamura e van Woesik testaram colônias de acropora (Acropora digitifera) em água quente, sob luz forte (Marine Ecology Progress Series, 2001): com fluxo alto, a sobrevivência foi alta; com fluxo baixo, baixa. Os autores propõem que a diferença entre os locais em 1998 veio, em parte, da troca de substâncias entre o coral e a água, que a correnteza acelera.
No aquário, há dois erros opostos (conclusão nossa):
- Fluxo de menos: coral num canto morto, coberto de detrito ou de muco que não sai, com pólipos murchos. Mude a bomba de posição ou acrescente uma.
- Jato direto: coral com o tecido recolhido só do lado da bomba, ou um LPS (coral de pólipo grande, como a euphyllia) que não consegue abrir. Espalhe o fluxo, alterne as bombas ou mude o coral de lugar.
Quanto de circulação cada tipo de coral pede está na calculadora de fluxo do reef e no guia de bombas de circulação.
Quando o coral não cresce
Coral que não fecha nem perde cor, mas não cresce, passa pelos mesmos passos com outro peso (a leitura é nossa):
- Alcalinidade e cálcio: o esqueleto é feito deles. Alcalinidade no fundo da faixa, ou instável, é o primeiro suspeito. Meça o consumo diário como manda o guia da tríade.
- Fosfato e nitrato no chão: o coral sem comida para de crescer antes de perder a cor (conclusão nossa; Holmes-Farley liga o fosfato baixo demais ao coral pálido).
- Luz de menos para aquele coral: o PAR de cada grupo está no guia de iluminação.
- Praga lenta: red bugs e nudibrânquio estancam o crescimento antes de matar (guia de pragas de coral).
Os testes de rotina e o que um teste de laboratório (ICP) acrescenta estão no guia de parâmetros do reef.
Resumo do diagnóstico
| O que você vê | Primeiro suspeito | Onde ler mais |
|---|---|---|
| Clareou de cima para baixo depois de luz nova ou de mudar o coral de lugar | Luz forte demais, sem rampa | Iluminação de corais |
| Vários corais fecharam juntos | Temperatura, salinidade ou alcalinidade | Tríade do reef, salinidade |
| Pálidos, com nitrato e fosfato zerados no teste | Nutriente de menos | Nitrato e fosfato |
| Um coral piora sozinho, com manchas ou marcas | Praga no coral | Pragas de coral |
| Pólipos arrancados, coral que só abre no escuro | Peixe ou invertebrado que belisca | Ficha de cada espécie |
| Tecido recolhido do lado da bomba, ou coral coberto de detrito | Fluxo errado | Calculadora de fluxo |
A tabela resume a ordem deste guia; não é regra das fontes. Mais de uma causa pode estar agindo junto, e o estudo de Wiedenmann mostra uma delas: nutriente fora de proporção piora o efeito do calor e da luz.
Perguntas frequentes
Meu coral fechou e está perdendo a cor. O que faço primeiro?
Não mexa em tudo de uma vez. Pergunte o que mudou nas últimas semanas (luz, posição, bicho novo, bomba, dosagem) e, se nada mudou, teste temperatura, salinidade e alcalinidade, depois nitrato e fosfato. Coral branqueado não está morto, segundo a NOAA, mas fica mais fraco e pode morrer: vale achar a causa logo (conselho nosso).
Coral fechado com parâmetros normais: o que pode ser?
Primeiro, confira se os testes estão certos (refratômetro calibrado, reagente na validade). Depois olhe o que os testes de rotina não pegam: nutriente zerado (Holmes-Farley diz que fosfato baixo demais pode deixar o coral pálido), praga no próprio coral, peixe ou caranguejo que belisca, coral vizinho que queima e fluxo errado.
Por que meu coral não cresce?
Os suspeitos, na ordem deste guia: alcalinidade baixa ou instável (o esqueleto é feito de cálcio e alcalinidade; Holmes-Farley recomenda 7 a 11 dKH), nutriente no chão, luz de menos para aquele coral e praga lenta, como red bugs.
Coral branco está morto?
Não necessariamente. A NOAA diz que o coral branqueado não está morto: ele expulsou as algas que o alimentam e está mais fraco e mais sujeito a doença. A NOAA registra que, quando o branqueamento não é severo, o coral pode se recuperar — e que o coral branqueado pode morrer. Coral morto mostra o esqueleto nu, sem tecido, e logo cobre de alga (conclusão nossa).
De onde vêm os números
Esta página afirma números de temperatura, salinidade, alcalinidade e nutrientes; cada um tem a sua fonte. O que está marcado como «conclusão nossa», «conselho nosso» ou «posição nossa» é nosso, não das fontes.
- NOAA Ocean Service — What is coral bleaching? — agência oceânica do governo dos EUA. Sustenta o que é o branqueamento (temperatura, luz ou nutrientes, expulsão das zooxantelas), o coral branqueado que não está morto mas fica sem comida, mais sujeito a doença e pode morrer, a recuperação quando o branqueamento não é severo, o calor como principal causa e a radiação solar alta como agravante.
- NOAA Coral Reef Watch — Degree Heating Week (DHW) — programa de monitoramento da NOAA. Sustenta o limiar de 1 °C acima da média do mês mais quente, as 12 semanas de calor acumulado, e os 4 e 8 °C-semanas — números de recife no oceano, não de aquário.
- Randy Holmes-Farley — Optimal Parameters for a Coral Reef Aquarium (publicado em 2014) — químico, autor de referência em química de aquário de recife. Sustenta 76 a 82 °F na tabela e até 83 °F no texto, 35 ppt e densidade de 1,0264, 7 a 11 dKH e o papel da alcalinidade no esqueleto, 5 a 50 ppm de nitrato, 0,06 a 0,3 ppm de fosfato e o fosfato baixo demais que deixa o coral pálido.
- Wiedenmann e colegas — Nutrient enrichment can increase the susceptibility of reef corals to bleaching (Nature Climate Change, 2013) — artigo revisado por pares, Universidade de Southampton. Sustenta o nitrogênio alto com fosfato limitado que aumenta o branqueamento por temperatura e luz, pela falta de fosfato nas algas simbiontes.
- Nakamura e van Woesik — Water-flow rates and passive diffusion partially explain differential survival of corals during the 1998 bleaching event (Marine Ecology Progress Series 212, 2001) — artigo revisado por pares. Sustenta o experimento com Acropora digitifera em água quente e luz forte: sobrevivência alta com fluxo alto e baixa com fluxo baixo, e a explicação, em parte, pela difusão.
Conversões e contas nossas. 76 °F = 24,4 °C; 82 °F = 27,8 °C; 83 °F = 28,3 °C. 1 °C × 4 semanas = 4 °C-semanas. As notas sobre os peixes e invertebrados que beliscam vêm das fichas de espécie do site, cada uma com a sua fonte.
O que não tem fonte, e fica dito. Não achamos fonte de primeira linha que dê quanto a alcalinidade pode oscilar por dia sem fazer mal ao coral, nem o prazo que um coral branqueado aguenta antes de morrer no aquário. Os números ficam de fora. A ordem do diagnóstico é nossa.
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